微生物限度检验方法验证方案（转贴）
微生物限度检验方法验证方案&&
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1.适用范围
本方案适用于本公司各品种微生物限度检验方法的验证。
通过验证确认所采用的方法适合于该药品的微生物限度的测定 。
项目责任人：负责验证方案的起草及具体实施。
验证管理员：负责验证工作的组织、协调及管理。
QA现场监控员：负责验证实施过程中的监督检查，取样，确保结果的可靠性。
QC负责人：负责验证方案中检验方法的审核及按照规定的取样计划对标准检验操作程序的准确执行，负责组织实施。
QC检验员：负责验证方案的起草与参与实施，并对所测数据准确性负责。
质量部经理：负责验证方案及报告的审核和批准。
通过验证以确认所采用的方法适合于该药品的细菌、霉菌及酵母菌的测定；确认所采用的方法适合于该药品的控制菌的检查。根据样品特性制订检验方法和检验条件，按制定的方法进行试验，根据验证结果判断是否符合验证标准。若符合，按验证的方法和条件进行药品的微生物限度检查；若不符合，重新建立制订检验方法和检验条件，再进行验证，直至验证结果符合设立的验证标准。
4.2细菌、霉菌及酵母菌计数方法的验证
当建立药品的微生物限度检查时，应进行细菌、霉菌及酵母菌计数方法的验证，以确认所采用的方法适合于该药品的细菌、霉菌及酵母菌的测定。.验证试验可与供试品的细菌、霉菌及酵母菌计数同时进行。
4.2.1.验证用菌株及菌种要求
大肠埃希菌【CMCC（B）44102】、金黄色葡萄球菌【CMCC（B）26003】、枯草芽孢杆菌【CMCC（B）63501】、黑曲霉【CMCC（F）98003】、白色念珠菌【CMCC（F）98001】。
大肠埃希菌为革兰氏阴性菌，金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性菌，枯草芽孢杆菌为产芽孢杆菌，前述菌株作为细菌计数验证用菌株；黑曲霉为霉菌，白色念珠菌为酵母菌，作为霉菌及酵母菌计数验证用菌株。
验证实验所用的菌株传代次数不得超过5代 （从菌种保存中心获得的冷冻干燥菌种为0
代），并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验菌株的生物学特性。
4.2.2.验证菌菌液制备
大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌菌液制备：接种大肠埃希菌、金色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至10ml营养琼脂培养基中，35～37℃
培养18～24小时。取此培养液1ml加0.9%无菌氯化钠溶液9ml，采用10倍递增稀释法，稀释至10-6~10-7，制成每1ml含菌数
50～100cfu的菌悬液。
4.2.2.2.白色念珠菌菌液制备：接种白色念珠菌的新鲜培养物至10ml改良马丁培养基中，23～28℃培养
24～48小时；取此培养液1ml加0.9%无菌氯化钠溶液9ml，采用10倍递增稀释法，稀释至10-6~10-7，制成每1ml含菌数
50～100cfu的菌悬液。
4.2.2.3.接种黑曲霉的新鲜培养物至改良马丁琼脂斜面培养基中，23～28℃培养5～7天，加入3～5ml
0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱，吸至无菌试管内，取1ml加0.9%无菌氯化钠溶液9ml，采用10倍递增稀释法，稀释至10-4~10-6，制成每1ml含孢子数50～100cfu的孢子悬液。
4.2.3. 供试液的制备
4.2.3.1.无抑菌活性的供试品供试液的制备
◆稀释剂：pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液
◆液体供试品：供试品10ml置锥形瓶中，加入90ml稀释剂，混匀，作为供试液（1：10）。
◆固体、半固体、粘稠性供试品供试品：
称取供试品10g置锥形瓶中，加稀释剂至100ml，混匀后，作为供试液（1：10）。
4.2.3.2.具有抑菌活性的供试品供试液的制备
当供试品具有抑菌活性时，须先消除抑菌活性，其方法如下：
培养基稀释法：取供试液2ml，每0.2ml的供试液注一皿或每0.1ml的供试液注一皿；或取供试液1ml每0.5ml的供试液注一皿，倾注15ml的培养基，测定细菌、霉菌及酵母菌的菌数，混匀，凝固，培养。每1ml供试液所注的平皿生长的菌数之和即为1ml的菌落数。计算每1ml供试液的平均菌落数，
按平皿法计数规则报告菌数；控制菌检查时可加大增菌液的用量。
◆离心沉淀集菌法：取一定量的供试液，3000转/分离心20分钟（供试液如有沉淀，先以500转/分钟离心5分钟，取全部上清液再离心），弃去上清液，留底部集菌液约2ml，加稀释液补至原量。
◆薄膜过滤法：取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，过滤，冲洗，按薄膜过滤法测定其菌落数。
中和法：选取适宜的中和剂如磺胺类药物加入适当的对氨基苯甲酸，含重金属的药物在培养基内加入巯基化合物如硫乙醇酸钠-半胱氨酸，洗必泰制剂加入聚山梨酸
80（3%）或卵磷脂（3%），卤素中加入硫代硫酸钠（0.1%）等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性后测定。
4.2.4. 菌液组&
测定所加的试验菌数。采用平皿法，取试验用的1ml菌液（约50～100cfu）分别注入平皿中，立即倾入培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，按平皿法测定其菌落数。
4.2.5.试验组
4.2.5.1.平皿法：取试验可能用的最低稀释级1ml供试液和50～100cfu试验菌，分别注入平皿中，立即倾入培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，按平皿法测定其菌落数。
4.2.5.2.培养基稀释法（平皿法）：取试验可能用的最低稀释级1ml供试液分别注入N个平皿中，每个平皿再注入50～100cfu试验菌，分别注入平皿中，立即倾入培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，按平皿法测定其菌落数。
4.2.5.3薄膜过滤法：取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入50～100cfu试验菌，过滤，按薄膜过滤法测定其菌落数。至少要一张膜。
离心沉淀集菌法：取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，如供试液含许多药渣，先以500转/分钟离心3~5分钟，取全部上清液，再以3000转/分离心
20分钟，取下面1ml液体，并用稀释剂洗涤管底，将洗涤液与1ml液体一起采用平皿法或薄膜过滤法计数。
4.2.6. 供试品对照组
取规定量供试液，按菌落计数方法测定供试品本底菌数（方法和试验组相同）。
4.2.7.稀释剂对照组
若供试液需要分散、乳化、中和、离心或薄膜过滤法等处理时，应增加稀释剂对照组，用稀释剂代替供试品，加入试验菌，使最终浓度为每1ml
供试液含50～100cfu，按试验组的供试液制备方法和计数方法计数。
4.2.8.回收率计算
4.2.8.1.试验组回收率计算
试验组的菌回收率＝&
& 试验组的菌回收率—供试品对照组平均菌落数&
菌液组的平均菌落数& &
4.2.8.2. 稀释剂对照组回收率计算
试验组的菌回收率＝&
& 稀释剂对照组平均菌落数& &
菌液组的平均菌落数& &
计数方法验证至少应进行3次独立平行试验，并分别计算各试验菌每次试验的回收率。
4.2.8.结果判断
在3次独立的平行试验中，稀释剂对照组的菌回收率（稀释剂对照组的平均菌落数占菌液组的平均菌落数的百分率）≥70%。若试验组的菌回收率（试验组的平均菌落数减去供试品对照组的平均菌落数占菌液组的平均菌落数的百分率）≥70%。照该供试液制备方法和计数法测定供试品的细菌、霉菌及酵母菌数；若任一次试验中试验组的菌回收率低于70%，应采用自然沉降法、培养基稀释法、离心沉淀集菌法、薄膜过滤法、中和法等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证，使试验组菌回收率大于70%。
4.3. 控制菌检验方法验证
当建立药品的微生物限度检查时，应进行控制菌检查方法的验证，以确认所采用的方法适合于该药品的的控制菌检查方法测定。若药品的组分或原检验条件发生改变可能影响检验结果时，检验方法应进行重新验证。验证试验也可与供试品的控制菌检查同时进行。
4.3.1.验证用菌株
大肠埃希菌（Esherichia coli）【CMCC(B)
44102】、金黄色葡萄球菌（ Staphylococcus）【CMCC(B)26003】、乙型付伤寒沙门菌（Salmonella
paratyphi B）【CMCC(B) 50094】、铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa）【CMCC (B)
验证实验所用的菌株传代次数不得超过5代 （从菌种保存中心获得的冷冻干燥菌种为0
代），并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验菌株的生物学特性。
4.3.2.菌液制备
大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、乙型付伤寒沙门菌、铜绿假单胞菌的新鲜培养物至10ml营养肉汤培养基中，35～37℃培养18～24小时；分别取培养液
1ml加0.9%无菌氯化钠溶液，采用10倍递增稀释法，稀释至10-5~10-7，制成每1ml含菌数10～100cfu的菌悬液。
4.3.3. 阴性菌对照组&
设立阴性菌对照组是为了验证该控制菌检查方法的专属性。方法同试验组，验证大肠埃希菌、大肠菌群、沙门菌检查法时的阴性对照菌采用金黄色葡萄球菌；验证铜绿假单胞菌、金黄色葡萄球菌、梭菌检查法时的阴性对照菌采用大肠埃希菌。阴性对照菌不得检出。
4.3.4.试验组&
4.3.4.1.常规法
◆ 大肠埃希菌&
取相当于1g或1ml供试品的供试液至100ml胆盐乳糖培养基中，阳性菌对照加入大肠埃希菌10～100cfu，阴性菌对照加入金黄色葡萄球菌
10～100cfu，35～37℃培养18～24小时，取此培养物按《微生物限度检查SOP》大肠埃希菌项下规定检查。
◆大肠菌群&
取含适量（不少于10ml）的胆盐乳糖发酵培养基管3支，分别加入含供试品1g或1ml
、0.1g或0.1ml、含供试品0.001g或0.001ml的供试液，阳性菌对照加入大肠埃希菌10～100cfu，阴性菌对照加入金黄色葡萄球菌
10～100cfu，35～37℃培养18～24小时，按《微生物限度检查SOP》大肠菌群项下规定检查。
◆沙门菌&
取供试品10g或10ml，直接或处理后接种至适量（不少于200ml）的营养肉汤培养基中，用匀浆仪或其他适宜方法混匀，阳性菌对照加入沙门菌
10～100cfu，阴性菌对照加入金黄色葡萄球菌10～100cfu，35～37℃培养18～24小时。按《微生物限度检查SOP》沙门菌项下规定检查。
◆铜绿假单胞菌&
取相当于1g或1ml供试品的供试液至100ml胆盐乳糖培养基中，阳性菌对照加入铜绿假单胞菌10～100cfu，阴性菌对照加入大肠埃希菌10～100cfu，35～37℃培养18～24小时。按《微生物限度检查SOP》沙门菌项下规定检查。
◆ 金黄色葡萄球菌&
取相当于1g或1ml供试品的供试液至100ml胆盐乳糖培养基中，阳性菌对照加入金黄色葡萄球菌10～100cfu，阴性菌对照加入大肠埃希菌
10～100cfu，35～37℃培养18～24小时。按《微生物限度检查SOP》金黄色葡萄球菌项下规定检查。
4.3.4.2. 培养基稀释法&
供试品有抑菌作用，放大培养基量，由1：100放大到1：300、1：500或1：1000，由于容器体积限制，一般放大到500ml或1000ml，本法适用于抑菌作用不强的样品。
4.3.4.3. 薄膜过滤法&
采用薄膜过滤法时，取规定量供试液，过滤，冲洗，试验菌应加在最后一次冲洗液中，过滤后，注入培养基或取出滤膜接入增菌培养基中。
4.3.4.4. 离心沉淀集菌法&
取规定量供试液，如供试液含许多药渣，先以500转/分钟离心3~5分钟，取全部上清液，再以3000转/分离心20分钟，取下面1ml液体，并将适量的稀释剂洗涤管底的洗涤液一并移入同瓶增菌液中，培养，本法适用于中度抑菌作用的样品。
4.3.4.5.中和法&
在供试品溶液中加入相应的中和剂，以减除供试品中抑菌成分的作用，中和剂应对微生物无毒性，与抑菌成分结合后的产物应对微生物亦无毒性，或有毒性但不影响待检菌的检出。
4.3.5.结果判断
至少应进行3次独立平行试验。阴性菌对照组不得检出阴性对照菌。若试验组检出试验菌，照该供试液制备方法和控制菌检查法进行该供试品控制菌的检查；若试验组未检出试验菌，应采用自然沉降法、培养基稀释法、离心沉淀集菌法、薄膜过滤法、中和法等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证。
5.验证的实施
5.1细菌、霉菌及酵母菌计数方法验证记录及控制菌检验方法验证记录(见附件)。
5.2.分析数据，综合整个验证过程，得出验证结论。
5.3.验证过程中发生的异常情况，按照《偏差处理程序》进行处理。
6.相关文件
《微生物限度检查SOP》&
7.1.药品的组分发生改变可能影响检验结果时。
7.2.验证时检验条件发生改变可能影响检验结果时。
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今日：31 | 主题：53578
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求助～～～微生物限度方法验证
楼层直达：
求助各位大神，最近在做一个乳膏剂的15版药典微生物限度检查方法验证～由于产品处方里面有硫酸新霉素(主要杀死金黄色葡萄球菌)，还有germall plus(防腐剂)，无水亚硫酸钠和依地酸二钠等抑菌剂～～～现状是用薄膜过滤法，样品加了100%的吐温80的量制成供试液后，用了1000ml的缓冲液(1%吐温80)冲洗每张膜，试验了稀释级别1：10和1：20.结果是其他三种菌的回收率都通过，枯草芽孢杆菌和金黄色葡萄球菌的回收率为0.
求路过的大神们帮帮忙呐！50个丁当相报！
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有那么强的杀灭力吗？我很怀疑是不是可以直接在目标菌液里加各种比例的样品溶液，验证样品对目标菌液有较强的杀灭力，因此产品不会受到目标菌的污染。
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多谢楼上大神的回复 。 药典附录上确实有提到个别菌株如果多种方法都试过回收率依旧达不到，那就证明该产品不会污染这类微生物！我想知道的是如果按楼上大神所说的这种方法操作，样品稀释级别多少合适呢？如果上述挑战性实验成功，是否针对这两种菌株的回收率实验就可以不做了呢？有没有相关的指南或者法规有提到呢？
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丁香园版主
中和怎么样？或膜过滤+中和等的组合应用怎么样？
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版主说的中和指中和产品中的防腐剂还是抗生素？目前只有采用稀释法和膜过滤结合的方法！请问版主中和抗生素和防腐剂的中和剂除了药典中推荐的还有其他指南中有么？谢谢啦
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