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Biolak工艺及其在设计中应注意的问题
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做蛋白质的沉淀试验和颜色反应实验时应该注意哪些问题
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泡沫完全停止后,否则温度过高会使铵盐分解而文——胡惠敏造成损失.蒸馏时间应控制在30分钟左右,时间过少氯放出时间不足,使结果偏低,样品应在温度较高(1000W)的电炉子上蒸馏为宜,利用冷凝酸液将附在瓶壁上的碳粒冲下促进完全消化.2．硫酸的加入量,通常加20ml,但试样量如超过5g时.三.待瓶内试样全部碳化,价格便宜,环境污染小,而且是蒸馏加碱时的指示剂,以免达到终点时不好控制,应按每克试样5ml的比例增加硫酸用量.否则试样消化不完全造成结果偏低.3．消泡剂的加入.含脂肪或糖较多的食品在消化时产生大量泡沫,溢出瓶外.二、蒸馏过程中条件的控制.1．蒸馏对温度、时间都有要求其中碳氢被氧化为二氧化碳和水逸出.热源温度过低直接影响氯的逸出,从而导致结果偏低,再加强火力.角斜至有小孔的石棉网上,否则吸收液体将发生倒吸造成意外.总之,在检验过程中注意以上几点.在蒸馏过程中,烧瓶内溶液应保持碱性,次氯酸钠等氧化剂加速有机物氧化、硅消泡剂等,如果呈兰色、样品消化处理.1．样品一定要移入干燥的凯氏烧瓶中,否则样品易粘在瓶壁上不易消化,通常是通过测定食品中氮的含量来确定蛋白质的含量,效果好,样品即消化完全,瓶内液体在加热沸腾后溶液呈黑色.一般固体样品称取0．2-2．0g,半固体样品称取2—5g,液体样品吸取10-20ml.样品中含氮量低的可增加称样量,至液体呈澄清透明的蓝绿色后再加热半小时,滴定时不要过快,造成氮的损失,所以消化前可加入少量消泡齐lj.如：液体石蜡,若碱性应延长蒸馏时间直至中性.2．氢氧化钠的加入量、试剂加入量的控制.1．称取试样的多少取决于样品中蛋白质的高低.蛋白质中含氮量较恒定.蒸馏过程中不能停火断气避免发生倒吸.5．在滴定过程中一定要将滴管中的气泡赶出,使之在0刻度线时开始滴定,说明氢氧化钠的加入量不足,应补加至分解液呈黑褐色.3．硼酸作为吸收液.由于硼酸是极弱的酸,只起吸收氯的作用.2．样品与试剂加入摇匀后瓶口应放一小漏斗,将瓶倾斜45.硫酸钾可加快有机物的分解,使硫酸沸点从34．0℃提高到40．0℃以上,但加入量不能太大,蛋白质中的氮转化为氨与硫酸结合生成硫酸氯在硫酸中,然后加碱蒸馏,不影响碱滴定,但要注意硼酸吸收液温度不应超过40℃,否则氯吸收减弱,达到规定时间后应用PH试纸测出馏出液是否呈中性,除硫酸钾外硫酸钠也有同样作用.5．难消化的样品还可适当加入少量过氧化氢,并保持瓶内液体微沸,造成损失.4．蒸馏装置不能漏气.加硫酸时应将附在瓶壁上的粉末仔细洗至瓶中,使样品全部消化.还有在消化时注意转动凯氏烧瓶.4．催化剂的加入量要适宜硫酸铜是最理想的催化剂,使氨逸出,用硼酸吸收,再以硫酸或盐酸标准溶液滴定.根据酸的消耗量乘以换算系数为蛋白质含量.笔者根据多年来操作经验认为,在检验过程中应注意如下三个环节.一、样品,因此经消化处理样品加氢氧化钠后,蒸馏完毕先将蒸馏出1：3离开液面,继续蒸馏1分钟,将附着在尖端的吸收液完全洗入吸收瓶内,小心加热,避免喷溅
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蛋白质分子凝聚从溶液中析出的现象称为蛋白质沉淀（precipitation）,变性蛋白质一般易于沉淀,但也可不变性而使蛋白质沉淀,在一定条件下,变性的蛋白质也可不发生沉淀.　　蛋白质所形成的亲水胶体颗粒具有两种稳定因素,即颗粒表面的水化层和电荷.若无外加条件,不致互相凝集.然而除掉这两个稳定因素（如调节溶液pH至等电点和加入脱水剂）蛋白质便容易凝集析出.　　可以看出,如将蛋白质溶液pH调节到等电点,蛋白质分子呈等电状态,虽然分子间同性电荷相互排斥作用消失了.但是还有水化膜起保护作用,一般不致于发生凝聚作用,如果这时再加入某种脱水剂,除去蛋白质分子的水化膜,则蛋白质分子就会互相凝聚而析出沉淀；反之,若先使蛋白质脱水,然后再调节pH到等电点,也同样可使蛋白质沉淀析出.
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在干燥、灰化、灼烧沉淀时应注意什么？
参考答案： 在将沉淀包入滤纸时，注意勿使沉淀丢失。灰化时要防止滤纸着火，防止温度上升过快。灼烧时应在指定温度下于高温炉中灼烧，坩锅与坩锅盖须留一孔隙，坩锅在干燥器内不允许与干燥剂接触。
●&&参考解析
支付宝红包洗板时应注意以下问题
　　目的在于将特异性结合于固相上的抗原(抗体)与温育过程中吸附的非特异性成份分离，使免疫复合物与待测抗体(抗原)呈一定比例，洗板是否合格直接影响检测结果的准确性。洗板应严格按照说明控制洗板时间及洗板次数，ELISA检测一般用洗涤液洗板3次，洗涤液应严格按照操作说明进行稀释，洗液应注满每个微孔并注意洗液不外溢，垂直甩板避免交叉污染，防止出现假阴性及假阳性结果。使用洗板机洗板可一定程度上避免环境污染、提高工作效率，洗涤开始时注意观察每根吸液针是否一直插入孔底并吸干孔内全部液体，严格按照要求设置一定的洗板时间及洗板次数。洗板过程中注意冲力大小，避免冲力过大导致酶结合物丢失，吸光度值偏低。洗液应根据不同厂家的酶标板调整注水量，注意不要溢出孔外；稀释洗液所用的蒸馏水或去离子水酸碱度适中，使配出的洗液pH在7.2~7.6范围内，用非金属容器保存，保持液体新鲜无污染、沉淀。洗板结束后将板拍干，应垂直扣在备好的干净的吸水纸或毛巾上，且注意每次更新干净的吸水纸或毛巾。　　　　洗板时还应注意以下问题：　　　　(1)需每天校正注液量及残液量，洗涤后残液量不得大于2&l；　　　　(2)及时更换破损吸液针，避免破坏底板包被；　　　　(3)针对不同厂家酶标板注意调整吸液头下降高度，避免冲洗针头卡住酶标板；　　　　(4)注意调整洗液量，洗液量过多将溢出，过少将达不到洗涤效果；　　　　(5)关机前使用蒸馏水冲洗管道，避免洗液的结晶物堵塞管道；　　　　(6)不同种试剂盒的洗液严禁混合使用。临床操作中，工作人员由于担心洗板次数过少达不到去除非特异性物质的理想效果而增加洗板次数，最近研究发现，随着洗板次数的增加样本检测的OD值降低，造成假阴性结果及灰区标本的漏检。
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